Fungicides and Bacillus subtilis against fungi isolated from commercial seed of Side oats grama (Bouteloua curtipendula)

Alicia Zárate-Ramos, Adrián Raymundo Quero-Carrillo, Leonor Miranda-Jiménez, Cristian Nava-Díaz, Leticia Robles-Yerena

Abstract


Banderita (Bouteloua curtipendula), produces abundant and appetizing forage for cattle under extreme arid conditions. The demand for its seed in Mexico is a direct function of the potential for the establishment of pastures and therefore, the sanitary quality of this is fundamental. Phytopathogenic fungi affect the seed and establishment of prairies. The objective was to evaluate in vitro the effect of six agrochemicals and one biological against fungi associated with Banderita seed, to reduce losses caused by these. Treatments were carried out in PDA culture medium combined with Captan, Thiophanate-methyl, Mancozeb, Benomil, Prochloraz, Thiabendazole and Bacillus subtilis at concentrations according to the case of 0 (control), 0.005, 0.001, 0.05, 0.01, 0.5, 0.1, 1.5, 10, 100, 150, 200, 250 and 300 mg L-1, against Alternaria alternata, Bipolaris cynodontis and Fusarium incarnatum. The bi-directional colony diameter was measured every 48 h. The effective concentration of 50% was estimated by a non-linear regression model; in relation to the percentage of inhibition of mycelial growth. Bacillus subtilis presented higher mycelial inhibition 97% (P <0.05), followed by Thiophanate-methyl (96%), Prochloraz (94%), Captan (93%) and Mancozeb (92%). Benomyl and Thiabendazole showed low inhibition of fungi with 46 and 37%. B. subtilis and Thiophanate-methyl are the products with the greatest possibility of controlling pathogens associated with Banderita grass seeds.

Keywords


biological control; chemical control; Bacillus subtilis; CE50

Full Text:

PDF

References


Alburqueque AD and Gusqui MR. 2018. Effectiveness of chemical fungicides for in vitro control of different phytopathogens in controlled conditions. Arnaldoa 25(2): 489-498. http://www.scielo.org.pe/pdf/arnal/v25n2/a09v25n2.pdf

Arce AC, Varela BI y Torres PS. 2019. Inhibición del crecimiento micelial de hongos asociados a antracnosis en ñame (Dioscorea alata). Agronomía Mesoamericana 30(2): 381-393. https://doi.org/10.15517/am.v30i2.32653

Arriagada V. 2000. Semillas. Inspección, análisis, tratamiento y legislación. Instituto Interamericano de Cooperación para la Agricultura (IICA-O.E.A.) 228p. https://repositorio.iica.int/handle/11324/13128

Bottero JY, Rose J, De Garidel C, Masion A, Deutsch T, Brochard G and Lanone S. 2017. Serenade: Safer and ecodesign research and education applied to nanomaterial development, the new generation of materials safer by design. Environmental Science: Nano, 4(3): 526-538. https://doi.org/10.1039/C6EN00282J

Chirinos DT, Castro R, Cun J, Castro J, Peñarrieta S, Solis L y Geraud F. 2020. Los insecticidas y el control de plagas agrícolas: la magnitud de su uso en cultivos de algunas provincias de Ecuador. Ciencia y Tecnología Agropecuaria 21(1): e1276. https://doi.org/10.21930/rcta.vol21_num1_art:1276

Cristóbal AJ, Navarrete MZ, Herrera PE, Mis MM, Tun SM y Ruiz SE. 2013. Hifomicetos asociados a plantas tropicales del estado de Yucatán, México: identificación genética y evaluación de fungicidas para su control. Revista Protección Vegetal 28(2): 138-144. http://scielo.sld.cu/pdf/rpv/v28n2/rpv07213.pdf

Dhingra OD and Sinclair JB. 1995. Basic plant pathology methods. CRC Press, Inc. Boca Raton, Florida.132-163p. https://www.scirp.org/(S(czeh2tfqyw2orz553k1w0r45))/reference/ReferencesPapers.aspx?ReferenceID=2200210

FAO y AfricaSeeds. 2019. Materiales para capacitación en semillas - Módulo 3: Control de calidad y certificación de semillas. Roma. 128 p. http://www.fao.org/3/ca1492es/CA1492ES.pdf

Flores JDY, Villegas AY, Castro RR, Carrillo RJC, Castañeda HE y Gómez VA. 2019. Efecto de la inoculación con hongos micorrízicos en el rendimiento de avena forrajera. Agroproductividad 12(8): 23-27. https://doi.org/10.32854/agrop.v0i0.1446

Gabriel OJ, Valverde LA, Indacochea GB, Castro PC, Vera TM, Aleivar CJ y Vera VR. 2021. Diseños Experimentales: Teoría y Práctica para Experimentos Agropecuarios. Universidad Estatal del Sur de Manabí (UNESUM), Jipijapa, Ecuador. 146 p. http://142.93.18.15:8080/jspui/handle/123456789/116

Herrera PE, Bacab PIM, Alejo JC, Tun SJM y Ruíz SE. 2011. Patogenicidad de Fusarium solani (Mart.) Sacc. Alternaria alternata (Fries) Keissler en Thevetia peruviana (Pers.) K. Schum. y su control in vitro. Fitosanidad 15(4):231-236. http://www.redalyc.org /articulo.oa?id= 209123682005

Iacomi VB, Avenot H, Bataillé SN, Laurent E and Simoneau P. 2004. In vitro fungicide sensitivity of Alternaria species pathogenic to crucifers and identification of Alternaria brassicicola field isolates highly resistant to both dicarboximides and phenylpyrroles. Crop Protection 23(6): 481– 488. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2003.10.003

Imran AHM, Hussein N, Ali S, Ahmed KJ, Saleem K and Babar MM. 2013. Behavior of Bipolaris orizae at differernt temperatures, culture media, fungicides and rice germplasm for resistance. Pakistan J of Phytopathology 25(1): 8-90. https://www.researchgate.net/publication/270452094_Behaviour_of_Bipolaris_oryzae_at_different_temperatures_culture_media_fungicides_and_rice_germplasm_for_resistance

Madia MC y Perris S. 1994. Hongos patógenos en semillas de especies forrajeras tropicales. Nota de investigación. Pasturas Tropicales, 16(1): 41-43. https://tropicalgrasslands.info/public/journals/4/Elements/DOCUMENTS/1994-vol16-rev1-2-3/Vol16_rev1_94_art9.pdf

Malandrakis AA, Apostolidou ZA, Markoglou A and Flouri F. 2015. Fitness and cross-resistance of Alternaria alternata field isolates with specific or multiple resistance to single site inhibitor and Mancozeb. European J of Plant Pathology 142(3): 489-499. https://doi.org/10.1007/s10658-015-0628-5

Maude RB. 1985. Erradicative seed treatment. Seed Science and Technology. 11, 907-920. https://worldveg.tind.io/record/17569

Merlington AA. 2014. Management options for control of Fusarium dry rot (Fusarium spp.) and potato common scab (Streptomyces spp.) of potato (Solanum tuberosum L.) in Michigan. Michigan State University. Thesis–Master of Science. 148 p. https://doi.org/doi:10.25335/M5GX8R

Ñacato SCA, Valencia GMF y Acurio VRD. 2018. Aislamiento, identificación y pruebas in vitro de cepas autóctonas de Bacillus subtilis como agente de biocontrol de Alternaria spp. en Brassica oleracea var. italica. Tesis de Grado. Universidad Politécnica Salesiana, Ecuador. http://dspace.ups.edu.ec/handle/123456789/12144

Patiño L. y Rodríguez M. 2001. Aislamiento e identificación de hongos fitopatógenos y evaluación de fungicidas frente a los hongos más relevantes en vid (Vitis vinífera), variedad chardonnay en el viñedo dan Martin en el municipio de Sogamoso. Sogamoso: Trabajo de grado Pontificia Universidad Javeriana. 12-14

Parveen S, Ganie AA and Wani AH. 2013. In vitro efficacy of some fungicides on mycelial growth of Alternaria alternata and Mucor pyriformis. Archives of Phytopathology and Plant Protection 46(10): 1230–1235. https://doi.org/10.1080/03235408.2013.763617

Peláez ÁA, de los Santos VS, Yépez EA, Parra CFI y Reyes RRT. 2016. Efecto sinérgico de Trichoderma asperellum T8A y captan 50® contra Colletotrichum gloeosporioides (Penz.). Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 7(6): 1401-1412. http://www.scielo.org.mx/pdf/remexca/v7n6/2007-0934-remexca-7-06-1401.pdf

Pirelli GJ, Anderson NP, Craig AM and Young CA. 2016. Endophyte toxins in grass and other feed sources. Risk to Livestock. EM-9156. Oregon State University. 10p. https://catalog.extension.oregonstate.edu/em9156

PMARP (Plan Maestro de la Alianza Regional para la Conservación de los Pastizales). 2012. Plan Maestro de la Alianza Regional para la Conservación de los Pastizales del Desierto Chihuahuense 2011-2016. J. C. Guzmán-Aranda, J. Hoth y H. Berlanga (eds.). Comisión para la Cooperación Ambiental. Montreal, Canadá. 64p

Quero CAR, Hernández GFJ, Velázquez MM, Gámez VHG, Landa SP y Aguilar LP. 2016. Métodos de establecimiento de pasturas en zonas áridas de México utilizando semillas crudas o cariópsides. Tropical Grasslands-Forrajes Tropicales 4(1):29-37. https://doi.org/10.17138/tgft(4)29-37

Quero CAR, Hernández FJ, Pérez GP, Hernández RA, García LG, Landa SP y Ramírez SES. 2017. Germinación de cariópsides clasificados por tamaño y diásporas de cuatro pastos para temporal semiárido. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas 8(3):489-502. https://doi.org/10.29312/remexca.v8i3.26

Quero CAR, Enríquez QJF y Miranda JL. 2007. Evaluación de especies forrajeras en América tropical, avances o status quo. Interciencia 32(8): 566-571. https://www.redalyc.org/pdf/339/33932812.pdf

Quero CAR, Zárate RA, Robles YL, Nava DC, Miranda JL and González MS. 2020. Pathogenic fungi associated to commercial seed of Mexican varieties of Bouteloua curtipendula. Mexican J of Phytopathology 38(2): 198-214. https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.2002-4

Rivero G.D, Martínez B, Ramírez AM, Cruz A y Rodríguez PAT. 2008. Actividad antifúngica in vitro de las quitosanas k1 y sigma frente A Bipolaris oryzae (B. de Haan) Shoem. Rev. Protección Vegetal 23 (1): 43-47. https://www.researchgate.net/publication/262502313_ACTIVIDAD_ANTIFUNGICA_in_vitro_DE_LAS_QUITOSANAS_k1_y_SIGMA_FRENTE_A_Bipolaris_oryzae_B_de_Haan_Shoem

Roede JR and Miller GW. 2014. Mancozeb. Encyclopedia of Toxicology, 144-146. Elsevier Inc. (consultation, august 2018). https://doi.org/10.1016/B978-0-12-386454-3.00157-3

Rondón O, Sanabría de AN y Rondón A. 2006. Respuesta in vitro a la acción de fungicidas para el control de antracnosis, Colletotrichum gloeosporioides Penz, en frutos de mango. Agronomía Tropical 56(2): 219-235. http://ve.scielo.org/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0002-192X2006000200005

Romero VSD, Tlapal BB, Cadena IJ, Nieto DÁ y Arévalo GL. 2015. Hongos causantes de enfermedades postcosecha en chayote (Sechium edule (Jacq.) Sw.) y su control in vitro. Revista Agronomía Costarricense 39(2): 19-32. https://www.redalyc.org/jatsRepo/436/43642603002/43642603002.pdf

Sandoval CRA, Martínez PRÁ, Hernández IM, Fernández EE, Arvizu MS and Soto ML. 2011. Postharvest biological and chemical control of Fusarium stilboides on bell pepper (Capsicum annuum L.). Revista Chapingo Serie Horticultura 17(2): 161-172. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1027-152X2011000200009

Sandoval ME, Leyva MSG, Villaseñor MHE, Rodríguez GMF y Mariscal ALA. 2012. Diversidad de hongos en semilla de trigo de temporal. Revista Mexicana de Fitopatología 30:145-149. Disponible en línea: http://www.scielo.org.mx/pdf/rmfi/v30n2/v30n2a5.pdf

Sánchez AJF, Wehenkel C, Carrete CFO, Murillo OM, Herrera TE and Quero CAR. 2018. Establishment attributes of Bouteloua curtipendula (Michx.) Torr. Populations native to México. Revista Fitotecnia Mexicana 41(3): 237-243. http://www.scielo.org.mx/pdf/rfm/v41n3/0187-7380-rfm-41-03-237.pdf

Song M., Yun HY and Kim YH. 2014. Antagonistic Bacillus species as a biological control of Ginseng root rot caused by Fusarium cf. incarnatum. J of Ginseng Research 38(2): 136–145. https://doi.org/10.1016/j.jgr.2013.11.016

Tapia C. 2005. Mecanismos de acción, reacciones adversas y nuevos antimicóticos. Meadwave 5(4): 3548. https://www.medwave.cl/link.cgi/Medwave/PuestaDia/Cursos/3548

Villareal DF, Villa RE, Cira CL, Estrada AI, Parra CF y de los Santos VS. 2018. El género Bacillus como agente de control biológico y sus implicaciones en la bioseguridad agrícola. Revista Mexicana de Fitopatología 36(1): 95-130. https://doi.org/10.18781/r.mex.fit.1706-5




DOI: http://dx.doi.org/10.18781/R.MEX.FIT.2104-4

Refbacks

  • There are currently no refbacks.